Hamilton（汉密尔顿,哈美顿）微量器在大鼠、小鼠等实验动物上的应用方法和技巧
1. 皮射：皮射较为简单，一般都取背部及后腿皮下。小鼠通常在背部皮射，将皮肤拉起，入皮下，把针尖轻轻向左右摆动，容易摆动则表明已刺入皮下，然后。拔针时，以手指捏住部位，可药液外漏。熟练者可把小鼠放在金属网上，一只手拉住鼠尾，小鼠以其习惯向前方爬动，在此状态下，易将人背部皮下，。此法可用于大批时。药量为0.1~0.3ml/kg体重。
家兔皮射时，用左手拇指及中指将免的背部皮肤提起使成一皱折，并用食指按压皱折的一端，使成三角队皮下空隙，以利。右手持器，自皱折下刺入。证实在皮下时，松开皱折，将药液注入。
豚鼠、大鼠、狗、猫等背部皮肤较厚，器针头不易进人，硬进容易折断针头，故给这些动物作皮射时不应选用背部皮肤。一般狗、猫多在大腿外例；豚鼠在后大腿内恻；大鼠可在左侧下腹部。
2. 皮内：此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。将动物部位的毛剪去，酒精。用卡介苗器带4号细针头沿皮肤表浅层，随之慢慢注入量的药液。当溶液注入皮内时，可见到皮肤表面马上会鼓起桔皮样小泡，同时因部位局部缺血，皮肤上的毛孔为明显。此小泡如不很快消失，则证明药液确实在皮内；如很快消失，就可能注在皮下，应重换部位。
3. 肌肉：此法比皮下和腹腔用得较少，但当给动物不溶于水而混悬于油或其它溶剂中的时，常来用肌肉。选择动物肌肉发达部位，如猴、狗、猫、兔可注入两侧臀部或股部肌肉。时固定动物勿使其活动，将臀部部位被毛剪去，右手持器，使器与肌肉成60°角，刺入肌肉中，为进人血管，注药液之前要回抽针栓，如无回血则可注药，完毕后用手轻轻部位，帮助药液吸收。大鼠、小鼠、豚鼠因其肌肉较小，不常作肌肉，如需肌注，可入大腿外侧肌肉。用5~6号针头，小鼠每腿不过0.1 ml。
4. 腹腔：小白鼠腹腔时，左手固定好动物，将腹部朝上，右手将器的针头在下腹部腹白线稍向左的位置，从下腹部朝头方向刺入皮肤，针头到达皮下后，再向前进针3~5 ml，接着使针与皮肤呈45°角刺人腹肌，针尖通过腹肌后消失。在此处保持针尖不动的状态下，回抽针栓，如无回血或尿液，再以的速度轻轻注入药液。为避免刺破内脏，可将动物头部放低，使脏器移向横隔处。小鼠的量为0.1~0.2 ml/kg(体重)
大鼠腹腔与小鼠相同。量为1~2 ml/kg(体重)。
狗、猫、兔等动物腹腔内，可由助手抓住动物，使其腹部向上，部位都大致相似。兔在下腹部近腹白线左右两侧约1 cm处，狗在脐后腹白线侧边1~2 cm处。
5. 静脉：根据不同动物的种类选择血管的部位。－般选择容易针的血管。因为是通过血管内给药，所以于液体，如果是混悬液，可能会因悬浮粒子较大而引起血管栓塞。
6. 小鼠一般多用尾静脉，前先将动物装入固定盒内固定好，使其尾巴露出，尾部用45~50℃温水浸泡1-2 min或用75%酒精棉球擦之，使血管扩张并使表皮角质，以拇指和食指捏住尾根部的左右恻，使血管更加扩张，尾部静脉显得更清楚，以无名指和小指夹住尾端部，以中指从下面托起尾巴，以使尾巴固定。用4号针头从左右两静脉注入。针头在尾静脉内平行推进少许，左手的三指捏住尾巴，并连针头和鼠尾一起捏住，以动物活动时针头脱出。如针确已在血管内，则药液进入无阻，否则隆起发白出现皮丘，可拔出针再移向前。完毕后，随即用左手拇指按住部位，右手放射器，取一棉球裹住部位并轻轻揉压，使血液和药液不致流出。需反复静脉时，尽可能从尾端开始，按次序向尾根部移动。量为0.05~0.1ml/kg(体重)。
尾静脉的要点是：前尾静脉尽量充血；要用较细的针头；针头刺入后，要使其与血管走向平行；当针头进入顺利无阻时，须把针头和鼠尾一起固定好，不要晃动，以免出血造成血肿或溶液溢出；部位尽量选用尾静脉下1/3处，因此处皮薄，血管较易注入。
大鼠尚可切开皮肤于股静脉或颈外静脉，但需麻醉进行。
